大肠杆菌载体 E.coli Vector 大肠杆菌宿主菌株 E.coli 细菌广宿主载体 bacateria broad range host vector 链霉菌载体及菌株 Streptomyces 芽孢杆菌载体 Bacillus vector 芽孢杆菌宿主菌株 乳酸菌载体 lactic acid bacteria vector 乳酸菌宿主菌株 lactic acid bacteria strain 细菌基因敲除载体 毕赤酵母载体 毕赤酵母宿主菌株 酿酒酵母载体 酿酒酵母宿主菌株 丝状真菌载体 mold/fungi vector 乳酸克鲁维酵母载体 酵母真菌基因敲除基因编辑载体 植物细胞载体 plant cell vector 农杆菌菌株Agrobacterium tumefaciens strain 植物细胞基因敲除载体 plant cell 哺乳动物细胞载体 哺乳动物细胞荧光载体 荧光素酶报告基因载体 哺乳动物细胞基因敲除基因编辑载体 杂交系统 慢病毒载体 腺病毒载体 逆转录病毒载体 杆状病毒表达载体 基因干扰 RNAi载体 基因/cDNA/ORF 转座子质粒系统 transposon 金黄色葡萄球菌载体 staphylococcus aureus 假单胞菌载体 噬菌体 phage 不动杆菌载体 双岐杆菌载体 藻类表达载体 链球菌载体 厌氧菌载体 基因治疗载体 大肠杆菌基因突变体菌株 细菌荧光质粒 白色念珠菌载体 体外转录载体 谷氨酸棒杆菌载体 酿酒酵母基因突变体菌株 线虫载体 斑马鱼载体 Zebra fish 果蝇,昆虫载体Drosophila 鱼类细胞载体 fish cell 分支杆菌载体 克雷伯菌 枯草芽孢杆菌基因缺失突变株
乳酸乳球菌nice表达系统(nz8149和nz3900)电转化方法 |
发布时间:2021-11-06 22:13:05 | 浏览次数: |
1. 电转化基本步骤 参考 Holo 的方法,并 作修 改。具 体 如 下,第 1 天 挑 取 划 线 培 养 的 NZ3900 单菌落接种于 5 mL GM17 培养液中,30 ℃ 静置培养 12 h,再从其中取出 500 μL 培养液转接 于 10 mL SGM17 中,30 ℃ 静置培养 12 h。第 2 天 将 10 mL 培养液转接于 100 mL SGM17 中,30 ℃ 静 置培养一定时间( 2、3、4、5、6 h) ,冰浴 20 min 后,离 心,弃上清。用 40 mL 预冷的溶液Ⅰ重悬菌体,冰 上静止 20 min 后,离心,弃上清。用 25 mL 预冷的 溶液Ⅱ重悬菌体,冰上静置 20 min 后,离心,弃上 清。再用 15 mL 预冷的溶液Ⅰ重悬菌体,冰上静置 20 min 后,离心,弃上清。最后加入 1 mL 预冷的溶 液Ⅰ重悬菌体,按 50 μL /支分装,- 80 ℃ 存放。上 述操作的所有离心条件均为 4 ℃,5 000 r/min 离心 10 min。 从 -80 ℃ 冰箱 中取出感受态细胞,置于冰上解冻 10 min; 取 1 μL 质粒加入感受态细胞中混合均匀后转移至已预冷 的电击杯中,轻轻敲击电击杯使混合物进入电击杯 的底部; 选择不同电压电击完毕后迅速加入 950 μL 预冷的 GM17MC 恢复培养基,30 ℃ 静置复苏培养 2 h,涂布溴甲酚紫筛选培养基平板,培养 24 ~ 48 h 后计算总菌落数和黄色菌落数目。 2.最优化电转化条件: 在固定电阻200 Ω、电容25 μF 条 件下,收获对数生长前期的乳球菌制作感受态细胞,并以80 μL 体积分装,采用2 mm 规格的电击杯,加 入浓度为 1. 2 μg /μL 的质粒,在电场强度和脉冲时间分别为 10 kV/cm 和 5 ms 的条件下完成电击转 化。转化后的菌液恢复培养 2 h 后涂板计数,转化效率最高可以达到 2. 6 × 104 CFU/μg DNA。 |
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