大肠杆菌载体 E.coli Vector 大肠杆菌宿主菌株 E.coli 细菌广宿主载体 bacateria broad range host vector 链霉菌载体及菌株 Streptomyces 芽孢杆菌载体 Bacillus vector 芽孢杆菌宿主菌株 乳酸菌载体 lactic acid bacteria vector 乳酸菌宿主菌株 lactic acid bacteria strain 细菌基因敲除载体 毕赤酵母载体 毕赤酵母宿主菌株 酿酒酵母载体 酿酒酵母宿主菌株 丝状真菌载体 mold/fungi vector 乳酸克鲁维酵母载体 酵母真菌基因敲除基因编辑载体 植物细胞载体 plant cell vector 农杆菌菌株Agrobacterium tumefaciens strain 植物细胞基因敲除载体 plant cell 哺乳动物细胞载体 哺乳动物细胞荧光载体 荧光素酶报告基因载体 哺乳动物细胞基因敲除基因编辑载体 杂交系统 慢病毒载体 腺病毒载体 逆转录病毒载体 杆状病毒表达载体 基因干扰 RNAi载体 基因/cDNA/ORF 转座子质粒系统 transposon 金黄色葡萄球菌载体 staphylococcus aureus 假单胞菌载体 噬菌体 phage 不动杆菌载体 双岐杆菌载体 藻类表达载体 链球菌载体 厌氧菌载体 基因治疗载体 大肠杆菌基因突变体菌株 细菌荧光质粒 白色念珠菌载体 体外转录载体 谷氨酸棒杆菌载体 酿酒酵母基因突变体菌株 线虫载体 斑马鱼载体 Zebra fish 果蝇,昆虫载体Drosophila 鱼类细胞载体 fish cell 分支杆菌载体 克雷伯菌 枯草芽孢杆菌基因缺失突变株
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基于分选酶Sortase的枯草芽孢杆菌表面展示系统(也适用于其他革兰氏阳性细菌) |
分选酶( sortase) 普遍存在于革兰氏阳性细菌中,是一类膜结合的转肽酶,负责将表面蛋白共价结合到细胞壁的 肽聚糖上。
自噬菌体表面展示技术建立以来,人们又相 继开发了细菌、真菌等多种表面展示系统,如大 肠杆菌等革兰氏阴性细菌、葡萄球菌等革兰氏阳 性细菌和酵母等真菌的表面展示系统。表面展示 系统可应用于疫苗开发、蛋白质及多肽文库筛选、 生物传感器研制、全细胞生物催化剂、生物吸附剂 等领域和临床诊断以及污染环境的生物修复等, 而且新的应用途径仍在不断的扩展中[2,3]。目前 革兰氏阳性菌的表面展示系统多是由分选酶介导 的,外源蛋白与分选酶底物融合表达,通过分选酶 的转 肽 作 用 共 价 结 合 于 细 胞 壁 肽 聚 糖 上。 Schneewind 等[1]将大肠杆菌的磷酸酯酶插入到 protein A 的信号肽和分选信号之间进行融合表 达,首次在葡萄糖球菌中进行了表面展示。利用 来自金 黄 色 葡 萄 糖 球 菌 分 选 酶 底 物 protein A ( SpA) 的启动子、信号肽和分选信号以及 S. hyicus 的脂肪酶的启动子、信号肽和 SpA 的分选信 号,在革兰氏阳性细菌木糖葡萄球菌和山羊葡萄 球菌中成功地展示了具有二价金属离子结合活性 的聚组氨酸多肽,重组的葡萄糖球菌显示出一定 Ni 2 + 和 Cd2 + 离子 结 合 活 性[3,4]。Nguyen 和 Schumann [2]将 Listeria monocytogenes 中识别分选 信号 LPXTG 的 SrtA 分选酶编码基因转入枯草芽 孢杆菌,然后将 α-淀粉酶基因与金黄色葡萄球菌 的 fibronectin binding protein B( FnBPB) 的 C 端分 选信号编码区融合,一并转入枯草芽孢杆菌,在每 个枯草芽孢杆菌细胞表面展示了高达 240 000 分 子的 α-淀粉酶。此外,利用分选酶介导的表面展 示系统,在多种革兰氏阳性菌细胞表面成功展示 了纤维素结合域、内酰胺酶、酯酶、金属结合肽和 抗原、抗体等[3,4,5]。与其他展示系统相比,革兰 氏阳性菌表面展示系统具有以下优点: 表面蛋白 只需跨越细胞质膜,外源蛋白更易展示; 可允许多 达几百个氨基酸的外源蛋白插入,而革兰氏阴性 细菌表面展示系统的通常只能插入较短的片段; 革兰氏阳性菌细胞壁更厚,坚固且易于操作等。
[1] Schneewind O,Model P,Fischetti V A. Sorting of protein A to the staphylococcal cell wall[J]. Cell,1992,70,267 - 281.
[2]Samuelson P,Wernerus H,Svedberg M,et al. . Staphylococcal surface display of metal-binding polyhistidyl peptides [J]. Appl. Environ. Microbiol. ,2000,66: 1243 - 1248.
[3]Wernerus H,Lehtio J,Samuelson P,et al. . Engineering of staphylococcal surfaces for biotechnological applications[J]. J. Biotechnol. ,2002,96: 67 - 78
[4]Nguyen H D,Schumann W. Establishment of an experimental system allowing immobilization of proteins on the surface of Bacillus subtilis cells[J]. J. Biotechnol. ,2006,122: 473 - 482
[5] Lehtio J,Wernerus H,Samuelson P,et al. . Directed immobiization of recombinant Staphylococci on cotton fibers by functional display of a fungal cellulose-binding domain[J]. FEMS Microbiol. Lett. ,2001,195: 197 - 204.